1H8小鼠杂交瘤细胞
货号:BY-1183
品牌:乾思细胞
规格:T25瓶
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1H8 小鼠杂交瘤细胞概述

一、基本定义与来源

1H8 小鼠杂交瘤细胞是通过经典细胞融合技术构建的单克隆抗体分泌细胞系,命名中的 “1H8” 通常代表96 孔板筛选时的克隆位置(如第 1 板 H8 孔)。该细胞由免疫小鼠的脾 B 淋巴细胞骨髓瘤细胞(如 SP2/0 或 NS0)融合而成,兼具无限增殖能力特异性分泌单克隆抗体的特性,广泛应用于免疫学研究、诊断试剂开发及抗体药物筛选。

二、生物学特性与培养条件

  1. 细胞形态与生长行为
    • 形态特征:显微镜下呈圆形或椭圆形,悬浮生长为主,部分克隆可能轻度贴壁;细胞大小均一,核质比高,分裂期可见多核或哑铃状形态。
    • 生长曲线:对数生长期为 24~48 小时,适宜接种密度为 5×10⁴~1×10⁵ cells/mL,密度超过 1×10⁷ cells/mL 易因营养耗竭或酸性代谢产物积累导致凋亡。
    • 培养环境
      • 培养基:常用含 10% 胎牛血清(FBS) 的 RPMI 1640 或 DMEM,可添加 1% 丙酮酸钠、非必需氨基酸或 HEPES 缓冲液改善细胞状态;
      • 培养条件:37℃、5% CO₂、饱和湿度,建议每 2 天半量换液或根据密度调整换液频率。
  2. 抗体分泌特性
    • 亚型鉴定:需通过 抗体亚型检测试剂盒 确定(如 IgG2b、IgM 等)。例如,若 1H8 靶向炎症因子 IL-6,其亚型可能为 IgG1,适合用于中和实验或 ELISA 双抗夹心法。
    • 滴度与纯度:培养上清抗体滴度通常为 0.5~5 μg/mL,经 Protein A/G 亲和层析纯化后纯度可达≥95%,适用于免疫组化(IHC)、流式细胞术(FACS)等实验。
    • 稳定性:连续传代 15~20 代后需验证抗体分泌一致性,建议液氮冻存原始克隆(每管含 5×10⁵~1×10⁶ cells)避免遗传漂变。

三、制备与鉴定流程

  1. 关键技术步骤
    • 免疫方案:选择 6~8 周龄 BALB/c 或 C57BL/6 小鼠,通过腹腔注射目标抗原(如重组蛋白、肿瘤细胞裂解物),间隔 2~3 周加强免疫 2~3 次,末次免疫后 3 天取脾脏。
    • 细胞融合
      • 脾细胞与骨髓瘤细胞按 8:1~10:1 比例 混合,用 PEG 4000 诱导融合,通过 HAT 培养基 筛选(未融合的脾细胞和骨髓瘤细胞死亡,杂交瘤细胞存活);
      • 融合效率约为 10⁻³~10⁻²,阳性克隆率取决于抗原免疫原性及筛选方法(如 ELISA、斑点杂交)。
    • 克隆化与筛选:采用 有限稀释法(0.5~1 cell / 孔)或流式分选获得单克隆,通过间接 ELISA 筛选高亲和力克隆(如 1H8),并经亚克隆验证稳定性。
  2. 鉴定与质控内容
    • 抗体特异性验证
      • ELISA:检测上清与目标抗原的结合活性,设置阴性对照(未免疫小鼠血清)和阳性对照(已知抗体);
      • 功能实验:通过 Western blot 验证抗体与天然或变性抗原的反应性,或通过中和实验检测其生物学功能(如抑制病毒感染或细胞因子活性)。
    • 细胞身份确认
      • STR 分型:比对 ATCC 等数据库确认细胞系无误,排除 HeLa 等常见交叉污染;
      • 染色体核型分析:杂交瘤细胞染色体数通常为 80~110 条(脾细胞 40 条 + 骨髓瘤细胞 40~70 条),可通过吉姆萨染色观察异倍体特征。
    • 污染检测:定期进行支原体 PCR 检测(如 Mycoplasma Plus PCR Kit),并进行细菌 / 真菌培养,确保无外源污染。

四、应用场景与技术拓展

  1. 单克隆抗体的多元化应用
    • 基础研究工具:1H8 分泌的抗体可作为特异性探针用于细胞信号通路研究。例如,若其靶向磷酸化蛋白 p-ERK,可通过免疫荧光检测 MAPK 通路激活状态。
    • 诊断与治疗开发
      • 体外诊断:用于开发胶体金试纸条(如检测农药残留)或化学发光试剂盒(如肿瘤标志物定量);
      • 治疗探索:抗体可偶联化疗药物(如阿霉素)构建 ADC,或与免疫佐剂联用增强抗肿瘤免疫应答。
  2. 细胞工程与改造策略
    • 荧光标记与示踪:利用 CRISPR-Cas9 技术 敲入 GFP 或 mCherry 基因,实现活细胞动态追踪(如在荷瘤小鼠中观察抗体靶向分布)。
    • 双抗或多抗开发:通过二次融合或共转染技术,构建分泌双特异性抗体的细胞系(如同时识别 CD47 和肿瘤抗原),克服肿瘤免疫逃逸。
  3. 规模化生产优化
    • 采用 无血清培养基(如 HyClone SFM4CHO)和 波浪式生物反应器 进行悬浮培养,通过优化溶氧(DO 30~50%)和 pH(7.0~7.4),可将抗体产量提升至 200~500 mg/L,满足工业级需求。

五、保存与质量控制要点

  1. 冻存与复苏技术
    • 冻存液配方:90% FBS + 10% DMSO(或无血清冻存液),细胞密度调整为 1×10⁶~2×10⁶ cells/mL;
    • 降温程序:-80℃过夜后转入液氮,复苏时 37℃水浴快速融化(<1 分钟),台盼蓝染色检测存活率应≥85%。
  2. 质量监控核心指标
    • 细胞活性:活细胞比例需>90%,死细胞释放的核酸酶可能干扰免疫共沉淀(Co-IP)等实验结果。
    • 抗体效价与亲和力:间接 ELISA 效价需稳定在 1:10⁴~1:10⁵,亲和力常数(KD)可通过表面等离子共振(SPR)测定,通常需<10⁻⁹ M。
    • 遗传稳定性:每 10 代进行染色体核型分析,若出现染色体数目异常(如<80 条),需复苏原始冻存株。

六、注意事项与挑战

  1. 表位交叉反应风险:若多个克隆(如 1H8、1H9)靶向同一抗原,需通过表位竞争实验筛选非重叠表位抗体,避免夹心检测时的相互干扰。
  2. 人源化改造需求:鼠源抗体在临床应用中可能引发 HAMA(人抗鼠抗体)反应,可通过噬菌体展示技术转基因小鼠平台制备全人源抗体,降低免疫原性。
  3. 低血清驯化技巧:对于血清依赖型克隆,可采用逐步降血清法(每周降低 2% FBS)诱导适应无血清培养基,减少批次间差异。

1H8 小鼠杂交瘤细胞作为单克隆抗体制备的核心工具,其应用需结合具体研究目标进行个性化优化。随着合成生物学与高通量筛选技术的发展,该细胞系在精准医学和抗体工程领域的潜力将进一步释放。