1F3小鼠杂交瘤细胞
货号:BY-1184
品牌:乾思细胞
规格:T25瓶
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1F3 小鼠杂交瘤细胞概述

一、基本定义与来源

1F3 小鼠杂交瘤细胞是通过细胞融合技术获得的单克隆抗体分泌细胞系,命名中的 “1F3” 通常表示96 孔板筛选时的克隆位置(第 1 板 F3 孔)。该细胞由免疫小鼠的脾 B 淋巴细胞骨髓瘤细胞(如 SP2/0 或 NS0)融合而成,具备无限增殖能力特异性分泌单克隆抗体的特性,广泛应用于免疫学、细胞生物学及生物医药研发领域。

二、生物学特性与培养条件

  1. 细胞形态与生长特性
    • 形态特征:显微镜下呈圆形或类圆形,以悬浮生长为主,部分克隆可能轻度贴壁;细胞大小均匀,核质比高,分裂期可见双核或多核形态。
    • 生长曲线:对数生长期为 24~48 小时,适宜接种密度为 5×10⁴~1×10⁵ cells/mL,*大耐受密度约 1×10⁷ cells/mL,超过此密度易因营养不足或代谢废物积累导致凋亡。
    • 培养环境
      • 培养基:常用含 10% 胎牛血清(FBS) 的 RPMI 1640 或 DMEM 培养基,可添加 1% 非必需氨基酸、丙酮酸钠或 HEPES 缓冲液改善细胞状态;
      • 培养条件:37℃、5% CO₂、饱和湿度,建议每 2 天半量换液或根据细胞密度调整换液频率。
  2. 抗体分泌特性
    • 亚型鉴定:需通过 抗体亚型检测试剂盒 确定(如 IgG1、IgM 等)。例如,若 1F3 靶向肿瘤标志物 CA19-9,其亚型可能为 IgG2a,适用于 ELISA 双抗夹心法或免疫组化检测。
    • 滴度与纯度:培养上清抗体滴度通常为 0.5~5 μg/mL,经 Protein A/G 亲和层析纯化后纯度可达≥95%,适用于流式细胞术(FACS)、免疫沉淀(IP)等实验。
    • 稳定性:连续传代 15~20 代后需验证抗体分泌一致性,建议液氮冻存原始克隆(每管含 5×10⁵~1×10⁶ cells)避免遗传漂变。

三、制备与鉴定流程

  1. 关键技术步骤
    • 免疫方案:选择 6~8 周龄 BALB/c 或 C57BL/6 小鼠,通过腹腔注射目标抗原(如重组蛋白、病毒颗粒或肿瘤细胞),间隔 2~3 周加强免疫 2~3 次,末次免疫后 3 天取脾脏。
    • 细胞融合
      • 脾细胞与骨髓瘤细胞按 8:1~10:1 比例 混合,用 PEG 4000 诱导融合,通过 HAT 培养基 筛选(未融合的脾细胞和骨髓瘤细胞死亡,杂交瘤细胞存活);
      • 融合效率约为 10⁻³~10⁻²,阳性克隆率依赖于抗原免疫原性及筛选方法(如 ELISA、斑点杂交)。
    • 克隆化与筛选:采用 有限稀释法(0.5~1 cell / 孔)或流式细胞术分选获得单克隆,通过间接 ELISA 筛选高亲和力克隆(如 1F3),并经亚克隆验证稳定性。
  2. 鉴定与质控内容
    • 抗体特异性验证
      • ELISA:检测上清与目标抗原的结合活性,设置阴性对照(未免疫小鼠血清)和阳性对照(已知抗体);
      • 功能实验:通过 Western blot 验证抗体与天然或变性抗原的反应性,或通过中和实验检测其生物学功能(如抑制细胞因子活性或病原体感染)。
    • 细胞身份确认
      • STR 分型:比对 ATCC 等数据库确认细胞系无误,排除 HeLa 等常见交叉污染;
      • 染色体核型分析:杂交瘤细胞染色体数通常为 80~110 条(脾细胞 40 条 + 骨髓瘤细胞 40~70 条),可通过吉姆萨染色观察异倍体特征。
    • 污染检测:定期进行支原体 PCR 检测(如 Mycoplasma Plus PCR Kit),并进行细菌 / 真菌培养,确保无外源污染。

四、应用场景与技术拓展

  1. 单克隆抗体的典型应用
    • 基础研究工具:1F3 分泌的抗体可作为特异性探针用于细胞信号通路研究。例如,若其靶向细胞膜蛋白 CD4,可通过免疫荧光染色分析 T 细胞活化状态。
    • 诊断与治疗开发
      • 体外诊断:用于开发胶体金试纸条(如检测过敏原)或化学发光试剂盒(如自身抗体检测);
      • 治疗探索:抗体可偶联放射性核素(如 ¹³¹I)用于肿瘤靶向成像,或与 CAR-T 细胞疗法联用增强肿瘤识别效率。
  2. 细胞工程与改造策略
    • 荧光标记与示踪:利用 CRISPR-Cas9 技术 敲入荧光蛋白基因(如 mCherry),实现活细胞体内示踪(如在炎症模型中观察抗体靶向分布)。
    • 双特异性抗体开发:通过二次融合或共转染技术,构建分泌双抗的细胞系(如同时识别 CD3 和肿瘤抗原),激活 T 细胞杀伤肿瘤细胞。
  3. 规模化生产优化
    • 采用 无血清培养基(如 Ex-Cell 302)和 搅拌式生物反应器 进行悬浮培养,通过优化 pH(7.0~7.4)和溶氧(DO 30~50%),可将抗体产量提升至 300~600 mg/L,满足中试或工业生产需求。

五、保存与质量控制要点

  1. 冻存与复苏技术
    • 冻存液配方:90% FBS + 10% DMSO(或无血清冻存液),细胞密度调整为 1×10⁶~2×10⁶ cells/mL;
    • 降温程序:-80℃过夜后转入液氮,复苏时 37℃水浴快速融化(<1 分钟),台盼蓝染色检测存活率应≥85%。
  2. 质量监控核心指标
    • 细胞活性:活细胞比例需>90%,死细胞释放的 DNA 酶可能干扰免疫共沉淀(Co-IP)等实验结果。
    • 抗体效价与亲和力:间接 ELISA 效价需稳定在 1:10⁴~1:10⁵,亲和力常数(KD)可通过表面等离子共振(SPR)测定,通常需<10⁻⁹ M。
    • 遗传稳定性:每 10 代进行染色体核型分析,若出现染色体数目异常(如<80 条),需复苏原始冻存株。

六、注意事项与挑战

  1. 表位交叉反应风险:若多个克隆(如 1F3、1F4)靶向同一抗原,需通过表位竞争实验筛选非重叠表位抗体,避免夹心检测时的相互干扰。
  2. 人源化改造需求:鼠源抗体在临床应用中可能引发 HAMA(人抗鼠抗体)反应,可通过噬菌体展示技术转基因小鼠平台制备全人源抗体,降低免疫原性。
  3. 低血清驯化技巧:对于血清依赖型克隆,可采用逐步降血清法(每周降低 2% FBS)诱导适应无血清培养基,减少批次间差异。

1F3 小鼠杂交瘤细胞作为单克隆抗体制备的重要工具,其应用需结合具体研究目标进行优化。随着单细胞测序和高通量筛选技术的发展,该细胞系在抗体药物开发和精准免疫治疗中的价值将进一步提升。